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3.2 飼料中蛋白質的測定

3.2.1 樣品來源飼料市場采集的具代表性飼料樣品10 個。

3.2.2 樣品處理將樣品粉碎后經(jīng)40 目篩過濾, 準確稱取0.2 g( 精確至0.0002 g) 飼料樣品于具塞試管中, 加入10 % KOH 溶液10 mL, 沸水浴30 min, 冷卻后用蒸餾水定容至25 mL, 過濾。取飼料過濾液0.5 mL, 以蒸餾水補齊至1.0 mL, 加4.0 mL 雙縮脲試劑, ( 37±0.2) ℃反應30 min。以空白管調(diào)零, 在540 nm 處測定吸光值, 依據(jù)標準曲線, 求得濃度值。計算公式如下:飼料樣品蛋白質含量(%) =C×2×25/W×1000。式中, C 為經(jīng)標準曲線求得的濃度值(mg/mL) ;W為飼料樣品重量( g) 。

4 結果與分析

4.1 不同飼料樣品的對比實驗結果見表1。從表1 可以看出, 雙縮脲法對飼料蛋白質含量的測定結果與凱氏定氮法測定結果, 相差較大, 比凱氏定氮法所測值低15.1 %( 5.8 % ～31.7 %) 。孫建平和侯彩云( 2005) 認為雙縮脲法的測定結果比凱氏法小10 % ～20 %。凱氏定氮法測得的蛋白質含量是粗蛋白質, 即含氮量乘以6.25, 其中包括無機氮和氨基酸。雙縮脲法測得的蛋白質含量是真蛋白質。是堿溶液所能溶解的蛋白質, 并且與雙縮脲反應轉為絡合物的顯色部分; 而不溶解的那一部分蛋白質和雙縮脲試劑的反應很少, 即使有反應, 產(chǎn)生的有色絡合物經(jīng)過濾并不存在于最終的比色液中。因此, 比色測定中讀出的吸光度值, 只是可溶蛋白質形成的有色絡合物的吸光度值。另外, 飼料中添加的蛋白質原料較為復雜, 有豆粕、花生粕、棉籽餅、菜籽餅、魚粉、羽毛粉等。測定中雖經(jīng)過粉碎、過篩、堿液煮沸, 但有些蛋白質仍難溶于測試液中, 與真實值相比產(chǎn)生較大誤差。并且飼料中含有大量的粗纖維, 對于粗纖維含量較高的樣品, 雙縮脲法測定結果不十分穩(wěn)定。

4.2 在牛奶、豆?jié){、牛血清中的對比實驗結果見表2。從表2 可以看出, 利用雙縮脲法測定牛奶、豆汁、牛血清蛋白質含量與凱氏法測定結果較為接近, 因為這些樣品中所含蛋白質溶解度較高,所含蛋白質種類相對較少, 其性質與標準蛋白液接近。

4.3 雙縮脲法測定飼料蛋白質含量精密度實驗對5 號、6 號飼料樣, 分別取6 個樣品用雙縮脲法測定蛋白質含量, 結果見表3。從表3 可以看出,雙縮脲法對同一飼料樣品的平行測定結果, 重現(xiàn)性較好, 精密度較高。符合國標規(guī)定蛋白質測定結果的相對偏差范圍, 但平均值與凱氏法結果差距較大。

5 小結

雙縮脲法測定飼料蛋白質雖然不經(jīng)消化, 不產(chǎn)生有害氣體, 但并不省時。飼料中淀粉經(jīng)堿溶液及加熱處理而糊化, 難以過濾, 尤其配合料淀粉含量高, 2 h 只能過濾1 ～2 mL( 濃縮料相對較快) ,且此法受工作環(huán)境( 溫度等) 影響較大, 若每次作標準曲線就更費時。飼料中成分復雜, 某些離子對顯色反應會產(chǎn)生影響, 這也是結果不穩(wěn)定的原因。

綜上所述, 雙縮脲法不適于配合飼料和濃縮飼料蛋白質含量的測定。